TA克隆技術(shù)(TA cloning)利用Taq聚合酶具有末端轉(zhuǎn)移酶(TdT)活性,但卻不具有3'-5'端外切酶校準(zhǔn)活性的特點(diǎn),可在PCR產(chǎn)物的3'端加上一個(gè)非模板依賴堿基“A”。pMD18-T是一種克隆PCR產(chǎn)物的載體,它是由pUC18載體在Xba I和Sal I識別位點(diǎn)間插入一個(gè)EcoR V位點(diǎn),然后用EcoR V進(jìn)行酶切使質(zhì)粒線性化,并在它的3'端添加“T”構(gòu)建而成。因其3'端帶有一個(gè)突出的“T”尾,能地與帶“A”尾的PCR產(chǎn)物連接,極大地提高了克隆的效率。TA克隆是目前克隆PCR產(chǎn)物zui簡便、快捷的方法。 TA 克隆的idea zui初來自1994 年。幾位學(xué)者發(fā)現(xiàn)Taq DNA聚合酶會(huì)在PCR產(chǎn)物的3’末端加上一個(gè)脫氧腺苷(A),而且這種特性與模板無關(guān)。之后,Invitrogen 公司發(fā)明了TA 克隆技術(shù),并擁有TA cloning 商標(biāo)的權(quán),直至2013 年。線性化的T 載體在3’末端擁有一個(gè)脫氧胸苷(T),與PCR 產(chǎn)物的A 尾巴互補(bǔ)。原理就是這么簡單。不過由于價(jià)格的原因,Invitrogen 的T 載體在國內(nèi)卻不是銷量的。Promega 的pGEM-T(easy)和Takara 的pMD18-T 因性價(jià)比高,更加深入人心。
TA 克隆的步驟無需贅述,相信大家都很清楚。無非就是PCR、連接、轉(zhuǎn)化、鑒定這幾個(gè)步驟,不過還有一些不得不說的問題,值得大家注意。
1、用什么樣的聚合酶?
不是所有的聚合酶都會(huì)在PCR產(chǎn)物末端加A。具有3’到5’外切酶活性的高保真酶就不會(huì)產(chǎn)生A 尾巴。如果你下一步想要做基因表達(dá),一定要用高保真酶,那也沒問題。只要用Taq 酶在產(chǎn)物末端加個(gè)A 就OK。步驟也很簡單,根本無需買個(gè)什么加 A 試劑盒,幾步就搞定了。
1. 用高保真酶擴(kuò)增完之后,在反應(yīng)管中加入 0.7-1 unit 的Taq 聚合酶。無需更換buffer,其中的dATP 已經(jīng)夠用。
2. 在72℃孵育8-10 分鐘。
3. 立即進(jìn)行純化,沉淀、跑膠、或用純化試劑盒。這一點(diǎn)相當(dāng)重要,否則高保真聚合酶會(huì)將A 尾巴或T 載體上的T 尾巴切掉。
有些率的聚合酶其實(shí)是Taq 酶和高保真酶的混合物,大約有一半的產(chǎn)物加了A 尾巴。所以你在克隆之前搞清楚你用的酶到底是否加 A,否則克隆出來白斑太少,又要討論好久。
2、PCR 產(chǎn)物的純度
如果你的PCR 產(chǎn)物只有*條帶,恭喜你。不過為保險(xiǎn)起見,還是用PCR 產(chǎn)物純化試劑盒來純化一次。否則白色菌落中的插入片段可能是引物二聚體哦。如果你發(fā)現(xiàn)有非特異條帶,那優(yōu)化一下PCR 反應(yīng),讓非特異條帶消失。跑膠純化是下策,因?yàn)槟z純化可能會(huì)帶走3’的A 尾巴。而且注意不要在紫外燈下暴露太久。只需5 秒,紫外對DNA 的傷害就足以檢測;而長達(dá)60 秒的照射會(huì)讓某段序列在測序時(shí)無法讀取。問題遠(yuǎn)比你想象中嚴(yán)重。
易生物提示:PCR 產(chǎn)物其實(shí)也有保質(zhì)期。為了保證連接效率,PCR 產(chǎn)物不要超過一天。因?yàn)樯厦娴腁 尾巴會(huì)隨著時(shí)間逐漸降解,導(dǎo)致連接效率下降。千萬不要為了省事,就整個(gè)一大管 PCR 產(chǎn)物,每次用一點(diǎn)。zui終反而更浪費(fèi)時(shí)間。
3、載體和片段的比例
這往往是影響克隆效果的zui大因素。通常來說,載體與片段的起始摩爾比為1:1。計(jì)算方法如下:
X ng PCR 產(chǎn)物 = (ng 載體 × kb 片段大?。?/ kb 載體大小
如果這樣的比例不能令你滿意,你可以在3: 1 到1:3 的范圍內(nèi)進(jìn)行優(yōu)化,選擇*的比例。 PCR 產(chǎn)物的濃度可以通過與Marker 比對估算出來。還有一種更準(zhǔn)確的方法,用GE 的NanoVue 超微量分光光度計(jì)。只需要0.5 ul,就能測量出樣品濃度,你再也不用舍不得珍貴的樣品了。0.5 ul 而已,小意思。