熒光定量PCR技術(shù)與普通PCR的區(qū)別: 理論上PCR是一個(gè)指數(shù)增長(zhǎng)的過(guò)程,但是實(shí)際的PCR擴(kuò)增曲線并不是標(biāo)準(zhǔn)的指數(shù)曲線,而是S形曲線。
這是因?yàn)殡S著PCR循環(huán)的增多,擴(kuò)增規(guī)模迅速增大,Taq酶、dNTP、引物,甚至DNA模板等各種PCR要素逐漸不敷需求,PCR的效率越來(lái)越低,產(chǎn)物增長(zhǎng)的速度就逐漸減緩。當(dāng)所有的Taq酶都被飽和以后,PCR就進(jìn)入了平臺(tái)期。由于各種環(huán)境因素的復(fù)雜相互作用,不同的PCR反應(yīng)體系進(jìn)入平臺(tái)期的時(shí)機(jī)和平臺(tái)期的高低都有很大變化,難以精確控制。所以,即使是96次PCR重復(fù)實(shí)驗(yàn),各種條件基本*,所得結(jié)果有很大差異,所以在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中我們不能根據(jù)zui終PCR產(chǎn)物的量直接計(jì)算出起始DNA拷貝數(shù)。
熒光定量PCR的方法:
熒光定量PCR所使用的熒光化學(xué)可分為兩種:熒光探針和熒光染料。而熒光定量 PCR 的方法相應(yīng)的可分為特異類和非特異類兩類,特異性檢測(cè)方法是在PCR反應(yīng)中利用標(biāo)記熒光染料的基因特異寡核苷酸探針來(lái)檢測(cè)產(chǎn)物;而非特異性檢測(cè)方法是在在PCR反應(yīng)體系中,加入過(guò)量熒光染料,熒光染料特異性地?fù)饺隓NA雙鏈后,發(fā)射出熒光信號(hào)。前者由于增加了探針的識(shí)別步驟,特異性更高,但后者則簡(jiǎn)便易行。
熒光定量PCRzui常用的方法是DNA結(jié)合染料SYBR GreenⅠ的非特異性方法和Taqman水解探針的特異性方法,在這里主要介紹這2種方法,其它方法請(qǐng)參考其它熒光定量PCR資料。
1、非特異性SYBR Green I染料法
SYBR Green I是一種結(jié)合于所有dsDNA雙螺旋小溝區(qū)域的具有綠色激發(fā)波長(zhǎng)的染料(結(jié)合示意圖),在游離狀態(tài)下,SYBR Green I發(fā)出微弱的熒光,但一旦與雙鏈DNA結(jié)合后,熒光大大增強(qiáng)(作用機(jī)理圖)。因此,SYBR Green I的熒光信號(hào)強(qiáng)度與雙鏈DNA的數(shù)量相關(guān),可以根據(jù)熒光信號(hào)檢測(cè)出PCR體系存在的雙鏈DNA數(shù)量。
2、特異性Taqman水解探針?lè)?/span>
Taqman熒光定量技術(shù)是以Taqman熒光探針為基礎(chǔ),Taqman熒光探針為一寡核苷酸,兩端分別標(biāo)記一個(gè)熒光發(fā)射基團(tuán)和一個(gè)熒光淬滅基團(tuán)。探針完整時(shí),發(fā)射基團(tuán)發(fā)射的熒光信號(hào)被淬滅基團(tuán)吸收;
PCR擴(kuò)增時(shí),Taq酶的5’-3’外切酶活性將探針酶切降解,使熒光發(fā)射基團(tuán)和熒光淬滅基團(tuán)分離,從而熒光監(jiān)測(cè)系統(tǒng)可接收到熒光信號(hào),即每擴(kuò)增一條DNA鏈,就有一個(gè)熒光分子形成,實(shí)現(xiàn)了熒光信號(hào)的累積與PCR產(chǎn)物形成*同步。從而實(shí)現(xiàn)定量(如下圖)。常用的熒光基團(tuán)是FAM, TET, VIC, HEX。